Muhammad Yongki Ivan Sugesta

Department of Chemical Engineering, Faculty of Engineering, Jember University, Indonesia

Revi Setia Wibowo

Department of Chemical Engineering, Faculty of Engineering, Jember University, Indonesia

Masrurotul Alfiah

Department of Chemistry, Faculty of Mathematics and Natural Science, University of Jember, Indonesia 68121

Achmad Sjaifullah
Department of Chemistry, Faculty of Mathematics and Natural Science, University of Jember, Indonesia 68121

Muhammad Reza

Department of Chemistry, Faculty of Mathematics and Natural Science, University of Jember, Indonesia 68121

DOI: https://doi.org/10.19184/jobc.v4i1.957 

ABSTRACT 

Banana peel contains starch, protein, fat, total fiber, unsaturated fatty acids, pectin, amino acids, polyphenols, and micronutrients. Horn banana peel has many benefits, namely, it can be processed into a natural antioxidant material that can minimize banana skin waste. The banana peel extraction method used is Ultrasound Assisted Extraction. Ultrasound-assisted extraction at optimal conditions produces good levels of total polyphenols with a short extraction time. In the use of ultrasonic no additional chemicals or other materials are needed. This study aims to determine the effect of extraction time (10, 20, 30 minutes), extraction temperature (20, 30, 40 ℃), and solvent ratio (gr/mL) (1:25, 1:30, 1:35) on polyphenols. The Design Expert V13 program with Response Surface Methodology (RSM) Box-Behnken Design (BBD) was used to determine the combination of extraction parameters that lead to optimal results for total polyphenol content. Based on the research that has been done, it can be stated that the extraction parameters affect the total polyphenol content. The highest total polyphenol content was 61,007 mg GAE/g sample with the extraction conditions at an extraction temperature of 30℃, an extraction time of 30 minutes, and a ratio of banana peel powder to a dissolution of 1:30 g/mL.

Keywords: banana peel, polyphenols, and ultrasound-assisted extraction

REFERENCES

[1]     Rizka Mukhlisa, L. P. (2018). Uji Fitokimia Ekstrak Infusa Kulit Pisang (Musa acuminata x Musa Balbisiana). 1-7.

[2]       Hortikultura, B. P. (2019). Produksi Pisang Menurut Provinsi, Tahun 2015-2019.

[3]       Pane, E. R. (2013). Uji Aktivitas Senyawa Antioksidan dari Ekstrak Metanol Kulit Pisang Raja (Musa paradisiaca var. sapientum). (2), 1978-8193.

[4] Mihai Babota, O. F. (2022). Optimized ultrasound-assisted extraction of phenolic compounds from Thymus comosus Heuff. ex Griseb. et Schenk (wild thyme) and their bioactive potential. 1350-4177.

[5]       Wiwik Purwati W, S. M. (2017). Analisis Pemanfaatan Limbah Kulit Pisang Sebagai Energi Alternatif Pada Baterai. Teknik Energi, Vol 13 No. 2; 61-67.

[6]       Wa Ode Ermawati, S. W. (2016). Kajian Pemanfaatan Limbah Kulit Pisang Raja (Musa paradisiaca var Raja) Dalam Pembuatan Es Krim. Sains dan Teknologi Pangan, Vol. 1, No. 1, p. 67-72.

[7]     Edi Suryanto, L. I. (2011). Potensi Senyawa Polifenol Antioksidan Dari Pisang Goroho (Musa sapien sp.). AGRITECH, Vol. 31, No. 4.

[8]   Deli Wakano, E. S. (2016). Pemanfaatan Limbah Kulit Pisang Sebagai Bahan Olahan Kripik Dan Kue Donat Di Desa Batu Merah Kota Ambon. Biology Science & Education, vol 5 no 2 Page 152-156.

[9]   Hadisoewignyo, L. F. (2017). Isolation and Characterization of Agung Banana Peel Starch from East Java Indonesia. International Food Research, 24(3):1324.

[10] Buanasari, Y. F. (2019). Potensi Metode Ultrasonic-Assisted Extraction (UAE) Dalam Mengekstrak Senyawa Aktif Dari Bahan Alam. Farmasi & Sains Indonesia, Vol. 2 No. 1.

[11]     Singh, J. K. (2016). In vitro antioxidant and antimicrobial properties of jambolan (Syzygium cumini) fruit polyphenols. LWT, 65: 1025-1030.

[12]  Putri Ade Rahma Yulis, Y. S. (2020). Aktivitas Antioksidan dari Limbah Kulit Pisang Muli (Musa acuminata Linn) dan Kulit Pisang Kepok (Musa paradisiaca formatypica). Al-Kimia, 189 - 200.

[13]   Andi Nursanti, I. H. (2018). Uji Aktivitas Antibakteri Limbah Kulit Pisang Kepok (Musa Acuminata x Balbisiana), Kulit Pisang Uli (Musa Paradisiaca Sapientum), Dan Kulit Pisang Nangka (Musa Sp L). Al-Kimia, 6(2):129–34.

[14]  Lee, N. D.-H. (2020). Komposisi Senyawa Fenol Dan Potensi Antioksidan Dari Kacang-Kacangan: Review. Agroteknologi, Vol. 14 No. 01.

[15]     Singh, B. S. (2017). Phenolic composition and antioxidant potential of grain legume seeds: A review. Food Research International, 101 : 1-16.

[16]   Syifa Fadilah, R. R. (2015). Pembuatan Biomaterial dari Limbah Kulit Pisang (Musa Paradisiaca). Prosiding Simposium Nasional Inovasi dan Pembelajaran Sains.

[17]    Garg, N. A.-A. (2016). Microbes in Food and Health. 42-45.

[18]   Megawati, E. L. (2016). Ekstraksi Pektin dari Kulit Pisang Kepok (Musa paradisiaca) Menggunakan Pelarut HCl sebagai Edible Film. Bahan Alam Terbarukan, JBAT 5(1) 14-21.

[19]     Pellegrini, M., Lucas-Gonzalez, R., Pakisndez-LHaipez, J., Ricci, A., Pérez lvarez, J., Sterzo, C., & Viuda-Martos. (2017). Bioaksesibilitas senyawa polifenol dari enam biji quinoa selama pencernaan gastrointestinal in vitro. Fungsi Makanan.

[20]   Dewi IGAM, G. P. (2021). Karakteristik Ekstrak Kulit Biji Kakao (Theobroma cacao L.) sebagai Sumber Antioksidan pada Perlakuan Suhu dan Waktu Maserasi. Rekayasa Dan Manajemen Agroindustri, 9(1):1.

[21]   Uji Aktivitas Senyawa Antioksidan dari Ekstrak Metanol Kulit Pisang Raja (Musa paradisiaca Sapientum). (2013). Valensi Vol. 3 No. 2, (75-80).

[22]   I Wayan Rai Widarta, I. W. (2015). Ekstraksi Komponen Bioaktif Daun Alpukat Dengan Bantuan Ultrasonik Pada Berbagai Jenis Dan Konsentrasi Pelarut. Seminar Nasional Sains dan Teknologi (Senastek).

[23]    Dwikora, A. S. (2016). Serbuk Kulit Pisang Tanduk (Musa)”Horn” Ijuk Enau Dan Serbuk Sabut Kelapa Sebagai Bioadsorben Logam Berat Cd (Ii) Dan Penjernih Air. Kartika-Jurnal Ilmiah Farmasi, 4(1), 37-41.

[24]     Baihaqi, I. W. (2018). Peningkatan Efektivitas Ekstraksi Oleoresin Pala Menggunakan Metode Ultrasonik. Jurnal Keteknikan Pertanian (JTEP), Vol. 6, No. 3.

[25] Jing Wang, B. S. (2008). Optimisation of ultrasound-assisted extraction of phenolic compounds from wheat bran. Food Chemistry, 106 : 804–810.

[26]   Dannisa Fathiya Rachma, A. W. (2021). Ekstraksi Oleoresin dari Kulit Mangga Kuweni (Mangifera Odorata. Griff) dengan Ultrasound Assisted Extraction (UAE) Bertingkat. Keteknikan Pertanian Tropis dan Biosistem, 9(1).

[27]   Meysi Andriani, I. D. (2019). Pengaruh Suhu Dan Waktu Ekstraksi Daun Belimbing Wuluh (Averrhoa bilimbi L.) Terhadap Aktivitas Antioksidan Dengan Metode Ultrasonic Assisted Extraction (UAE). Ilmu dan Teknologi Pangan, Vol. 8, No. 3, 330-340.

[28]    Bancha Yingngam, M. M. (2014). Ultrasound-assisted extraction of phenolic compounds from Cratoxylum formosum ssp. formosum leaves using central composite design and evaluation of its protective ability against H2O2-induced cell death. Asian Pacific Journal of Tropical Medicine, 7 (Suppl 1): S497-S505.

[29]   Ammar Altemimi, D. G. (2016). Ultrasound Assisted Extraction of Phenolic Compounds from Peaches and Pumpkins. PLoS ONE, 11(2): e0148758.

[30]   Ashadi Sasongko, R. W. (2017). Penentuan Total Fenol Ekstrak Umbi Bawang Dayak Hasil Ekstraksi Dengan MetodeUltrasoundAssisted Extraction (UAE) dan Ultrasonic-Microwave Assisted Extraction (UMAE). Jurnal Sains Terapan, Vol. 3 No. 2.

[31]   Bambang Susilo, S. H. (2016). Pengaruh Pretreatment dan Lama Waktu Ekstraksi terhadap Karakteristik Ekstrak Kulit Jeruk Purut (Citrus hystrix D.C) Menggunakan Ultrasonic Assisted Extraction (UAE). Keteknikan Pertanian Tropis dan Biosistem, Vol. 4 No. 3, 230-241.

[32]   Mar'atus Sholihah, U. A. (2017). Aplikasi Gelombang Ultrasonik untuk Meningkatkan Rendemen Ekstraksi dan Efektivitas Antioksi dan Kulit Manggis. Jurnal Keteknikan Pertanian (JTEP), Vol. 5, No. 2, p 161-168.

[33]    Asri Widyasanti, N. N. (2018). Karakteristik Fisikokimia Antosianin Ekstrak Kulit Buah Naga Merah Menggunakan Metode UAE. Ilmiah Rekayasa Pertanian dan Biosistem. Vol.6, No.1.  

[34]   Palente I, S. E. (2021). Karakterisasi Serat Pangan Dan Aktivitas Antioksidan Dari Tepung Kulit Kakao (Theobroma cacao L.). Chem Prog., 14(1):70–80.

[35]    Khairana K, P. Z. (2022). Pengaruh Metode Maserasi dan Ultrasonik terhadap Ukuran Partikel Ekstrak Kulit Buah Kakao (Theobroma cacao) metode maserasi dan ultrasonik. 4(1):4–6.

[36]   Maajid MN, S. R. (2021). Antibacterial Activity of Fermented and Non-Fermented Edel Cacao Bean Extract (Theobroma Cacao L.) Against Porphyromonas gingivalis. Humanistic Network for Science and Technology Health, 5(8):289–94.

[37]    Kyriakos Kaderides, L. P. (2019). Microwave-assisted extraction of phenolics from pomegranate peels: Optimization, kinetics, and comparison with ultrasounds extraction. Chemical Engineering & Processing: Process Intensification, 137: 1–11.

[38]    Sothornvit, P. R. (2019). Extraction of phenolic compounds from lime peel waste using ultrasonic-assisted and microwave-assisted extractions. Food Bioscience, 28:66–73.

[39]     Idah Rosidah, Z. R. (2017). Optimasi Kondisi Ekstraksi Senyawa Total Fenolik Buah Labu Siam (Sechium edule (Jacq.) Sw.) Menggunakan Response Surface Methodology. Media Litbangkes, Vol. 27 No. 2, 79–88.

[40]   Pagarra H, d. A. (2022). Identifikasi Senyawa Kulit Buah Kakao Sulawesi ( Theobroma cacao L .) Menggunakan Etanol dan Aseton . XI(I):68–77.

[41]     Anggi Pantria Saputri, I. A. (2020). Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Air Kulit Pisang Kepok (Musa acuminate x Musa balbisiana (ABB cv)) Dengan Metode ABTS (2,2 azinobis (3-etilbenzotiazolin)-6-asam sulfonat) Pada Berbagai Tingkat Kematangan. Kedokteran, Vol . 8 No.1.

[42]     Rudi Firyanto, M. S. (2019). Pengambilan Polifenol Dari Teh Hijau (Camellia sinensis) Dengan Cara Ekstraksi Menggunakan Aquadest Sebagai Pelarut. Prosiding SNST.

[43]     Enny Sholichah, R. A. (2019). Produk Samping Kulit Kopi Arabika Dan Robusta Sebagai Sumber Polifenol Untuk Antioksidan Dan Antibakteri.

[44]     Lisan Mella Rujiyanti, B. K. (n.d.). Pengaruh Lama Ekstraksi Kulit Melinjo Merah (Gnetum gnemon L.) Berbantu Gelombang Ultrasonik Terhadap Yield, Fenolik, Flavonoid, Tanin dan Aktivitas Antioksidan.

[45]     Arumsari, N. N. (2021). Studi Literatur Metode Ekstraksi Pektin dari Beberapa Sumber Limbah Kulit Buah. Riset Farmasi, Volume 1, No. 1, Hal : 55-63.

[46]   Diah Dhianawaty, d. R. (2015). Kandungan Total Polifenol dan Aktivitas Antioksidan dari Ekstrak Metanol Akar Imperata cylindrica (L) Beauv. (Alang-alang). Volume 47 No. 1.

[47]  Estrella Espada-Bellido, M. F.-G. (2016). Optimization of the ultrasound-assisted extraction of anthocyanins and total phenolic compounds in mulberry (Morus nigra) pulp. Food Chemistry.

[48]   Melini, V. M. (2021). Modelling and Optimization of Ultrasound-Assisted Extraction of Phenolic Compounds from Black Quinoa by Response Surface Methodology. Molekules, 26, 3616.

[49]    Pratiwi, N. N. (2017). Kandungan Fenolik, Flavonoid dan Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Paku Laut (Acrostichum aureum L.) Fertil dan Steril. Journal of Tropical Biodiversity and Biotechnology, Vol. 2, 51—56.

[50]     Susilo, D. N. (2017). Analisis Fitokimia Ekstrak Kulit Pisang Agung Semeru Dan Mas Kirana. Biologi dan Pembelajaran Biologi, Volume 2 Nomor 2.

[51]  Rafael G. Araujo, R. M.-J.-S. (2020). Process optimization of microwave-assisted extraction of bioactive molecules from avocado seeds. Industrial Crops & Products, 154: 112623.

[52]   Ida Adhayanti, T. A. (2018). Uji Kandungan Total Polifenol Dan Flavonoid Ekstrak Etil Asetat Kulit Pisang Raja (Musa paradisiaca var. sapientum). Media Farmasi, Vol. XIV. No. 1.

[53]  Daud A, S. N. (2019). Kajian Penerapan Faktor yang Mempengaruhi Akurasi Penentuan Kadar Air Metode Thermogravimetri. Lutjanus, 24(2):11–6.

[54]  R, H. U. (2017). Perbandingan Warna Tepung Suweg Fase Dorman dan Vegetatif Secara Instrumental dan Sensoris. Agrisaintifika Ilmu-Ilmu Pertanian, 1(1):64.

[55]   Kelly, B. (2014). An Water Content Determinations for Peat and Other Organic Soils Using the Oven Drying Method. An Int J, 32:1–31.

[56]  Adhiksana, A. (2017). Perbandingan Metode Konvensional Ekstraksi Pektin dari Kulit Buah Pisang dengan Metode Ultrasonik. Journal of Research and Technology, Vol. 3 No. 2.

[57]     Tri Saptari H, T. B. (2019). Kadar Fenolik dan Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol Rumput Laut Coklat (Padina australis). Fitomarka, Vol.9, No.1.

[58]     Melania Priska, N.P. (2018). Review: Pemanfaatan Antosianin dan Pemanfaatannya. Cakra Kimia, Volume 6 Nomor 2.

[59]  Barba-Espin, G., Glied, S., Crocoll, C., Dzhanfezova, T., Joernsgaard, B., Okkels, F., Lutken, H., & Muller, R. (2017). Foliar-Applied Ethephon Enhances the Content of Anthocyaninof Black Carrot Roots (Daucus carota ssp. sativus var. atrorubens Alef.). BMC Plant Biology 17 (70): 1-11. DOI: 10.1186/s12870-017-1021-7

[60]  M. Ramdani, O. Elasri, N. Saidi, N. Elkhiati, F.A. Taybi, M. Mostareh, O. Zaraali, B. Haloui, M. Ramdani. (2017). Evaluation of antioxidant activity and total phenol content of Gracilaria bursa-pastoris harvested in Nador lagoon for an enhanced economic valorization, Chem. Biol. Technol. Agric. 4 1–7

[61]   I. Norra, A. Aminah, R. Suri. (2016). Effects of drying methods, solvent extraction and particle size of Malaysian brown seaweed, Sargassum sp. on the total phenolic and free radical scavenging activity, Int. Food Res. J. 23 1558–1563

[62]  M. Musci, S. Yao. (2017). Optimization and validation of Folin–Ciocalteu method for the determination of total polyphenol content of Pu-erh tea, Int. J. Food Sci. Nutr.

[63]     I. Safitri, W. Warsidah, M.S.J. Sofiana, A.A. Kushadiwijayanto, T.N. Sumarni. (2021). Total phenolic content, antioxidant and antibacterial activities of Sargassum polycystum of ethanol extract from waters of Kabung Island, Berk, Berk. Sainstek. 9 139

[64]    S. Sedjati, E. Supriyantini, A. Ridlo, N. Soenardjo, V.Y. Santi. (2018). Kandungan pigmen, total fenolik dan aktivitas antioksidan Sargassum sp., J. Kelaut. Trop. 21-137.

[65]     K. Korzeniowska, B. Łęska, P.P. Wieczorek. (2020). Isolation and determination of phenolic compounds from freshwater Cladophora glomerata, Algal Res. 48

[66]     A.A. Samin, N. Bialangi, Y.K. Salimi. (2013). Penentuan kandungan fenolik total dan aktivitas antioksida dari rambut jagung Zea mays L. yang tumbuh di daerah Gorontalo, J. Sainstek. 7 247–259.

[67]   Andriani, M., Permana, I. D. G. M., & Widarta, I. W. R. (2019). Pengaruh Suhu dan Waktu Ekstraksi Daun Belimbing Wuluh (Averrhoa bilimbi L.) Terhadap Aktivitas Antioksidan Dengan Metode Ultrasonic Assisted Extraction (UAE). Jurnal Ilmu Dan Teknologi Pangan, 8(3), 330–340.

[68]   Rizky Amelia, F. (2015). Penentuan Jenis Tanin Dan Penetapan Kadar Tanin Dari Buah Bungur Muda (Lagerstroemia Speciosa Pers.) Secara Spektrofotometri Dan Permanganometri. Jurnal Ilmiah Mahasiswa Universitas Surabaya, 4(2), 1.

[69]   Jin HwanLee, Ki HunPark, Myoung-HeeLeec Hyun-TaeKimcWoo DuckSeocJun YoungKimcIn-YoulBaekcDae SikJangdTae JoungHa. (2013). “Identification, Characterisation, and Quantification of Phenolic Compounds in the Antioxidant Activity-Containing Fraction from the Seeds of Korean Perilla (Perilla Frutescens) Cultivars.” Food Chemistry 136(2):843–52.

[70]   T.S. Haryani, Tria. (2019). Kadar fenolik dan aktivitas antioksidan ekstrak etanol rumput laut coklat (Padina australis), Carbohydr. Polym. 6 5–10.

[71]     M.R. Marjoni, Afrinaldi, A.D. Novita. (2015). Kandungan Total Fenol Dan Aktivitas Antioksidan Ekstrak Air Daun Kersen (Muntingia calabura L.), Yars. Med. J. 23 187–1962.

[72]     I. Kadek Widhiana Putra, G. Ganda Putra, L. Putu Wrasiati. (2020). Perbandingan bahan dengan pelarut dan waktu maserasi terhadap ekstrak kulit biji kakao (Theobroma cacao L.) sebagai sumber antioksidan, J. Rekayasa Dan Manaj. Agroindustri. 8 167–176.

[73]     N. Milicevic, P. Kojic, C. Perussello, V. Banjac, M. Poji, B. Tiwari. (2021). Ultrasonics Sonochemistry Kinetic modelling of ultrasound-assisted extraction of phenolics from cereal brans, 79.

[74]   Sabathani, A., Widjanarko, S. B., & Yuwono, S. S. (2018). OPTIMASI WAKTU EKSTRAKSI DAN RASIO BAHAN PER PELARUT EKSTRAK DAUN PEPAYA UNTUK UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI. The Optimization of Extraction Time and Material Ratios per Solvent of Papaya Leaf Extract for Antibacterial Activity Test. 19(3), 193–206

[75]     F.U. Rohmah, A. Rahmawati, M.F. Rizkiana, A. Susanti. (2022). Optimization of extraction of bioactive compound from pegagan leaves using ethanol solvent with microwave-assisted extraction method (MAE), J. Biobased Chem. 2 40–5

[76]     B.L. Sari, T. Triastinurmiatiningsih, T.S. Haryani. (2020). Optimasi metode microwave-assisted extraction (MAE) untuk menentukan kadar flavonoid total alga coklat Padina australis, ALCHEMY J. Penelit. Kim. 16-38

[77]     M.G. Pertiwi, J. Fajrin, I.W. Sugiartha. (2018). Aplikasi response surface methodology (RSM) untuk meningkatkan kuat tekan paving block dengan campuran abu ampas tebu, Artik. Ilm. 1–15.

[78]    F. Rahmawaty, H.T. Sutanto. (2014). Penerapan metode permukaan respon untuk optimalisasi proses sealing pada pengemasan produk makanan jelly, J. Ilm. Mat. 3 1–6.

[79]   B. Yingngam, A. Chiangsom, A. Brantner. (2020). Modeling and optimization of microwave-assisted extraction of pentacyclic triterpenes from Centella asiatica leaves using response surface methodology, Ind. Crops Prod. 147.

[80]   B.A. Fachri, R.M. Abdilla, C.B. Rasrendra, H.J. Heeres. (2015). Experimental and modelling studies on the uncatalysed thermal conversion of inulin to 5-hydroxymethylfurfural and levulinic acid, Sustain. Chem. Process. 3 1–11. https://doi.org/10.1186/s40508-015-0035-4

[81]  T. Yılmaz, S. Tavman. (2017). Modeling and optimization of ultrasound assisted extraction parameters using response surface methodology for water soluble polysaccharide extraction from hazelnut skin, J. Food Process. Preserv. 41.

[82]  V.G.P. Putra, S. Mutiarahma, W. Chaniago, P. Rahmadi, D. Kurnianto, C. Hidayat, C. Carrera, M. Palma, W. Setyaningsih. (2022). An ultrasound-based technique for the analytical extraction of phenolic compounds in red algae, Arab. J. Chem. 15-103597

[83]     Diky Ramdani, Iman Hernaman, An An Nurmeidiansyah, dan Denie Heryadi. (2016). “The Potential of Nutrients, Phenols, and Tannins in Local Banana Peels of Ambon at Different Ripe Stages for Sheep Feeding”. (November):883–88.

[84]     Fidrianny, I., Anggraeni, N. A. S., & Insanu, M. (2018). “Antioxidant Properties of Peels Extracts from Three Varieties of Banana (Musa Sp.) Grown in West Java-Indonesia.” International Food Research Journal 25(1):57-64

[85]     Anal, Anil Kumar, Sirorat Jaisanti, and Athapol Noomhorm. (2014). “Enhanced Yield of Phenolic Extracts from Banana Peels (Musa Acuminata Colla AAA) and Cinnamon Barks (Cinnamomum Varum) and Their Antioxidative Potentials in Fish Oil.” Journal of Food Science and Technology 51(10):2632–39.

[86]    Ibrahim, A.M., Yunita dan H.S. Feronika. (2015). Pengaruh suhu dan lama waktu ekstraksi terhadap sifat kimia dan fisik pada pembuatan minuman sari jahe merah dengan kombinasi penambahan madu sebagai pemanis. Jurnal Pangan dan Agroindustri. 3 (2):530-541.

[87]   Yuliantari, N.W.A., I.W.R. Widarta dan I.D.G.M. Permana. (2017). Pengaruh suhu dan waktu ekstraksi terhadap kandungan flavonoid dan aktivitas antioksidan daun sirsak (Annona muricata L.) menggunakan ultrasonik. Scientific Journal of Food Technology. 4(1): 35-42

[88]    Margaretta, S., S.D. Hanyani, N. Indraswati dan H. Hindarso. (2011). Ekstraksi senyawa phenolic Pandanus amaryllifolius Roxb sebagai antioksidan alami. Jurnal Widya Teknik. 10(1):21-30.

[89]     Handayani, H., and F.H. Sriherfyna. (2016). Ekstraksi Antioksidan Daun Sirsak Metode Ultrasonik Bath (Kajian Rasio Bahan : Pelarut dan Lama Ekstraksi). Jurnal Pangan dan Agroindustri 4(1):262-272.

[90]     Winata, E. dan Yunianta. 2015. Ekstraksi Antosianin ~Buah Murbei (Morusalba L.) Metode Ultrasonic Batch (Kajian Waktu dan Rasio Bahan : Pelarut). Jurnal Pangan dan Agroindustri. 3(2) 773-783.

[91]     Yuanita, O. T. (2021). Efek Metode Pengolahan dan Penyimpanan Terhadap Kadar Senyawa Fenolik dan Aktivitas Ontioksidan. UNESA Journal of Chemistry, Vol. 10, No. 2.

[92]     Ni Wayan Ayuk Yuliantari, I. W. (2017). Pengaruh Suhu dan Waktu Ekstraksi Terhadap Kandungan Flavonoid dan Aktivitas Antioksidan Daun Sirsak (Annona muricata L.) Menggunakan Ultrasonik. Media Ilmiah Teknologi Pangan (Scientific Journal of Food Technology), Vo. 4, No.1, 35-42.

[93]    I Wayan Budiastra, S. S. (2020). Pengaruh Amplitudo Ultrasonik dan Waktu Ekstraksi Terhadap Rendemen dan Mutu Oleoresin Pala. Jurnal Keteknikan Pertanian, Vol. 8 No.2, p 45-52. 

[94]    Sandra Sekarsari, I. W. (2019). Pengaruh Suhu dan Waktu Ekstraksi dengan Gelombang Ultrasonik Terhadap Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.). Jurnal Ilmu dan Teknologi Pangan, Vol. 8, No. 3, 267-277.

[95]   Umar, K.; Srivastav, S.; Sharanagat, V.S. (2021). Ultrasound assisted extraction (UAE) of bioactive compounds from fruit and vegetable processing by-products: A review. Ultrason. Sonochem. 70, 105325.

[96]     Kumcuoglu, S.; Yilmaz, T.; Tavman, S. (2014). Ultrasound assisted extraction of lycopene from tomato processing wastes. J. Food Sci. Technol, 51, 4102–4107.

[97]     Silva, S., Costa, E. M., Calhau, C., Morais, R. M., & Pintado, M. E. (2017). Anthocyanin Extraction From Plant Tissues: A Review. Critical Reviews In Food Science And Nutrition, 57(14), 3072–3083.

[98]     Aulia, L. P., & Widjanarko, S. B. (2018). Optimasi Proses Ekstraksi Daun Sirsak (Annona Muricata L) Metode Mae (Microwave Assisted Extraction) Dengan Respon Aktivitas Antioksidan Dan Total Fenol. Jurnal Agroindustri Halal, 4(April), 79–87.